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植物RNA提取试剂盒图片
产品货号:
WE0408
中文名称:
植物RNA提取试剂盒
英文名称:
RNAtiqu Plant Kit
产品规格:
50T
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价

本试剂盒用于从各种植物中提取纯化高品质总RNA,也适用于真菌菌丝RNA的提取。独特的Shredder分离柱,用于匀质化和过滤高粘度的植物或真菌裂解物,同时采用硅基质膜吸附RNA进行纯化,使多聚糖等各种污染物通过洗涤被有效去除,经洗脱的RNA可直接用于各种下游实验。由本试剂盒提取RNA分子量大于200碱基,纯度高,几乎无DNA残留。如果是对微量DNA非常敏感的RNA实验,残留的DNA可利用无RNase的DNase I在柱上进行消化去除。提取的RNA可用于Northern Blot、Dot Blot、RT-PCR和体外翻译等实验。




组分规格
Buffer RL35mL
Buffer RLC35mL
Buffer RW140mL
Buffer RW2(浓缩液)11mL
RNase-Free Water10mL
吸附柱FL及收集管50套
吸附柱RM及收集管50套
无RNA酶离心管(1.5mL)50个

保存:室温


β-巯基乙醇、无水乙醇(新开封或提取RNA专用)。


  • 预防RNase污染,应注意以下几方面:
    • 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。
    • 玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时,塑料器皿可在0.5M NaOH中浸泡10分钟,用水彻底冲洗后高压灭菌。
    • 配制溶液应使用无RNase的水。
    • 操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。
  • 提取的样品避免反复冻融,否则影响RNA提取的量和质量。
  • Buffer RL在使用前请加入β-巯基乙醇,至终浓度为1%。如1mL Buffer RL加10μL β-巯基乙醇。加入β-巯基乙醇的Buffer RL室温可保存1个月。Buffer RLC使用时不需加β-巯基乙醇。
  • 第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在Buffer RW2中加入无水乙醇。
  • Buffer RL和Buffer RLC如果产生沉淀,请加热使其溶解后室温放置。
  • 所有离心步骤若无特殊说明均在室温下进行,且所有操作步骤动作要迅速。
  • 若下游实验对DNA非常敏感,建议用RNase-free DNase I(货号:WE0213)对RNA进行处理。



  • 取植物新鲜组织50~100mg,加入液氮迅速研磨成粉末。
  • 将研磨后的粉末收集到离心管(自备)中,加入600μL Buffer RL(使用前检查是否加入β-巯基乙醇)或Buffer RLC,涡旋振荡使其充分裂解。
    注意:
    • Buffer RL主要成分为异硫氰酸胍,适用于大多数植物组织的裂解。但有些植物组织(如玉米的胚乳),由于次级代谢产物较特殊,异硫氰酸胍使样品产生沉淀,导致RNA提取效果不佳,此时可加入Buffer RLC替代Buffer RL。
    • 56℃孵育1~3分钟有助于组织的裂解,但是淀粉含量高的植物不要进行高温孵育。
  • 将步骤2所得全部液体转移至已装入收集管的过滤柱FL中,12000rpm(~13400×g)离心2分钟,将收集管中的上清液转移到一个新的离心管(自备)中。
    注意:
    • 在吸取液体时可以将枪头尖端剪掉,便于取样。
    • 吸附柱FL可以除去大部分的碎片,但仍会有小部分流出,离心后会在收集管内形成沉淀,在进行下一步时注意避免吸到沉淀。
  • 在步骤3所得干净的裂解液中加入0.5倍体积的无水乙醇,迅速混匀。
    注意:加入乙醇后可能会产生沉淀,但不影响后续试验。
  • 将步骤4得到的溶液全部加入到已装入收集管的吸附柱RM中,若一次不能将全部溶液加入吸附柱中,请分两次转入。12000rpm离心15秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
  • 向吸附柱中加入700μL Buffer RW1,12000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
    可选步骤:如果要进行对微量DNA非常敏感的RNA实验,则用以下步骤替代步骤6。
    • 向吸附柱中加入350μL Buffer RW112000rpm离心15秒,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
    • 配制DNase I混合液:取52μL RNase-Free Water,向其中加入8μL 10×Reaction Buffer和20μL DNase I (1U/μL),混匀,配制成终体积为80μL的反应液。
      注意:以上体系为按照我公司产品RNase-free DNase I(货号:WE0213)反应体系进行配置,应用其他公司产品请参考相应说明书。
    • 向吸附柱中直接加入80μL DNase I反应液,20~30℃孵育15分钟。
    • 向吸附柱中加入350μL Buffer RW112000rpm离心15秒,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
  • 向吸附柱中加入500μL Buffer RW2(使用前检查是否加入无水乙醇),12000rpm离心15秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
  • 重复步骤7。
  • 12000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干吸附柱中的无水乙醇。
    注意:这一步的目的是将吸附柱中残余乙醇去除,乙醇残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。
  • 将吸附柱置于一个新的无RNase离心管中,向吸附柱的中间部位悬空加入30~50μL RNase-Free Water,室温放置1分钟,12000rpm离心1分钟,收集RNA溶液,-70℃保存RNA,防止降解。
    注意:
    • RNase-Free Water体积不应小于30μL,体积过小影响回收率。
    • 如果要提高RNA的产量,可用30~50μL新的RNase-Free Water重复步骤10。
    • 如果要提高RNA浓度,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,重复步骤10。

相关搜索:植物RNA提取试剂盒RNAtiqu Plant Kit
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